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jueves, 24 de marzo de 2011

Staphylococcus Aureus Enterotoxigénico ATCC 9144

En esta práctica vamos a comprobar si sois portadores de esta cepa de Staphylococcus Aureus peligrosa por la formación de toxinas. Se encuentra en la piel y mucosas de la mayoría de animales de sangre caliente. Existen portadores sanos ocasionales, intermitentes o permanentes. El 50% de las personas son portadoras de esta bacteria de vez en cuando (sobretodo en momentos de bajas defensas)

Primero realizaremos una preincubación en medio TSB (Tryptic Soy Broth) durante 24 h a 37ºC. A continuación una incubación en dos medios diferenciados: Baird-Parker con yema de huevo y telurito y Chapman-Manitol. Las dos siembras por agotamiento. Las colonias de S. Aureus en medio Baird-Parker salen negras debido a la precipitación del telurito y con un halo blanco de lipólisis por precipitación de la grasa del huevo.



Las colonias con Chapman Manitol de Staphylococcus Aureus salen de color amarillo por la fermentación del manitol. Otros Staphylococcus como el Staphylococcus Epidermis no fermentan el manitol y se ven de color rojo.



Para comprobar que se trata de la cepa de S. Aureus Enterotoxigénico hemos de realizar dos pruebas confirmatorias bioquímicas: prueba de la DNAasa y de la Coagulasa. En la de DNAasa realizaremos una siembra por estría en una placa preparada previamente con medio agar DNAsa. Tras la incubación durante 24-48 h a 37ºC añadiremos a la placa HCl 1N hasta cubrir. Esperamos unos minutos y veremos si es positiva o negativa. Si es positiva habrá una zona donde no aparecerá precipitado alrededor de la masa bacteriana.



la prueba de la COAGULASA se realizará en un tubo de hemolisis estéril con 0,5 ml de plasma de conejo. Se cogeran 1-2 colonias sospechosas del medio Baird Parker y se incubaran en el tubo a 37ºC durante 18h. Positivo: Aparece un coagulo en el tubo. Hay que tener cuidado ya que una sobreincubación podría dar falsos negativos, ya que el coagulo se reabsorbe.


Suerte, ¡¡ y a ver como salen vuestras placas!!

Sergio

PD: Si no os acordais de como se realizan las siembras os recomiendo entrar aquí.

lunes, 21 de marzo de 2011

Nuevas fotos de ambientales

Aqui tenemos mas fotos de Análisis de Microorganismos Ambientales, gentileza de Leti. Podemos ver cultivos tanto de TSA como Saboraud.





miércoles, 16 de marzo de 2011

Fotos ambientales

Caty nos enseña sus fantásticas fotos sobre microorganismos ambientales y de preparación de placas, ¡¡aquí las tenéis!!






Me han encantado las fotos porque se podrán comentar en clase. ¿Que pensáis? ¿todas las disposiciones de las placas son correctas?

¡¡Gracias por las fotos Caty!!!

Sergio

viernes, 11 de marzo de 2011

Fotos de Ambientales y manos

Tiago me ha enviado sus fotos de ambientales y de manos. A ver si os animáis todos y me enviáis mas fotos y así vemos que nos ha salido en la práctica!!!







Sergio

lunes, 13 de diciembre de 2010

Muestreo de superfícies para hongos

En esta ocasión se realizó el muestreo con placas de RODAC y medio Dextrosa Saboraud Agar selectivo para hongos y no para bacterias. Una vez llena totalmente la placa de Rodac se gira y se deja en contacto el Agar con la superficie durante unos segundos. La placa de deja durante una semana a 30ºC en la estufa en posición invertida.

Estas fueron algunas de las fotos tomadas:







Muestreo de superficies para microorganismos aerobios mesófilos

Durante el mes de Noviembre pudimos realizar la práctica de recuento de superfícies para microorganismos aerobios mesófilos. Las placas se realizaron con medio PCA (Plate Count Agar) y se realizó el método del bastoncito (o del hisopo). Para la realización de la práctica fue necesario tambien realizar medio Ringer 1/4 y una plantilla de 8cm x 8 cm con un agujero de exactamente 1cm2.

Para ello, una vez realizado el medio y esterilizado el material, se pudo emplacar y se empezó la práctica. Se introducen 10 ml de Ringer 1/4 en un tubo de ensayo con rosca. Se moja el hisopo estéril en el Ringer y pasamos el hisopo mojado por el cm2 de superficie. Se vuelve a introducir el hisopo dentro del tubo, se rompe y se cierra el tubo.

Una vez cogida la muestra se siembra en superfície sobre la placa de petri con PCA con un asa de Digralsky. Se deja en estufa invertidas a 37ºC durante 48-72 h. Se realiza por duplicado y con un blanco.

Estas fueron algunas de las fotos obtenidas: